VIABILIDADE PREDATÓRIA DE DUDDINGTONIA FLAGRANS EM MATRIZ ALGINATO DE SÓDIO ESTOCADO E REFRIGERADO POR CINCO ANOS SOB NEMATÓDEOS GASTRINTESTINAIS DE ASININOS

Autores

  • Felipe Bondiej Ventura Alvares Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,
  • Roberto Alves Bezerra Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,
  • Wlysse Ferreia Sarmento Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,
  • Jossiara Abrantes Rodrigues Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil
  • Thais Ferreira Feitosa Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil
  • Paulo Wbiratan Lopes da Costa Programa de Pós-Graduação em Ciência e Saúde Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil
  • Vinicius Longo Ribeiro Vilela Programa de Pós-Graduação em Ciência e Saúde Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil
  • Fabio Ribeiro Braga Departamento de Veterinária, Universidade de Vila Velha, Vila Velha - ES, Brasil

DOI:

https://doi.org/10.35512/ras.v4i4.4597

Resumo

Os fungos nematófagos são uma importante forma de controle biológico de nematódeos gastrintestinais, pois apresentam passagem segura e inerte pelo trato gastrintestinal dos animais e ação predatória sobre as larvas infectantes desses parasitas nas fezes. Foi avaliada a eficácia de predação de helmintos de formulações peletizadas de fungos nematófagos submetidas a longos períodos de estocagem em asininos. Foram utilizados 32 animais machos, sem raça definida para o experimento. Todos os animais foram vermifugados e então testados para constatação do valor de OPG 0. Foram administrados os fungos nematófagos peletizados por via oral e então foram coletadas amostras de fezes a cada 12 horas após a aplicação, durante 72 horas. Após as coletas, foram realizadas coproculturas com as fezes misturadas com vermiculita expandida e ensaios em placas de Petri com Ágar Água 2%. Nestas culturas, foram adicionadas 1000 larvas de estrôngilos, para recuperação de larvas L3 ao final da incubação. O fungo D. flagrans estocado por 5 anos em baixas temperaturas foi tão eficiente quanto o recém-produzido.

Biografia do Autor

Felipe Bondiej Ventura Alvares, Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,

Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,

Roberto Alves Bezerra, Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,

Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,

Wlysse Ferreia Sarmento, Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,

Departamento de Medicina Veterinária, Instituto Federal da Paraíba (IFPB), Sousa-PB, Brasil,

Jossiara Abrantes Rodrigues, Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil

Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil

Thais Ferreira Feitosa, Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil

Programa de Pós-Graduação em Ciência Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil

Paulo Wbiratan Lopes da Costa, Programa de Pós-Graduação em Ciência e Saúde Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil

Programa de Pós-Graduação em Ciência e Saúde Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil

Vinicius Longo Ribeiro Vilela, Programa de Pós-Graduação em Ciência e Saúde Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil

Programa de Pós-Graduação em Ciência e Saúde Animal, Universidade Federal de Campina Grande (UFCG), Patos-PB, Brasil

Fabio Ribeiro Braga, Departamento de Veterinária, Universidade de Vila Velha, Vila Velha - ES, Brasil

Departamento de Veterinária, Universidade de Vila Velha, Vila Velha - ES, Brasil

Referências

ARAÚJO, J.M.; ARAÚJO, J.V.; BRAGA, F.R.; CARVALHO, R.O.In vitro predatory activity of nematophagous fungi and after passing through gastrointestinal tract of equine on infective larvae of Strongyloides westeri. Parasitology Research. v.107, p.103–108, 2010.

BEVILAQUA, C.M.L.; RODRIGUES, M.L.; Cocordet, D.Identification of infective larvae of some common strongylids of horses. Revue de Médecine Vétérinaire. v.144, p.989–995, 1993.

BRAGA, F. R.; ARAÚJO, J.V.; ARAÚJO, J. M.; TAVELA, A. O.; FERREIRA, S.R.; SOARES, F. E. F. Influence of the preservation period in silica-gel on the predatory activity of the isolates of Duddingtonia flagrans on infective larvae of cyathostomins (Nematoda: Cyathostominae). Experimental Parasitology. v.128, p.460–463, 2011

CASTRO, A. A.; OLIVEIRA, C. R. C.; ANJOS, D. H. S.; ORNELAS, E. I.; BITTENCOURT, V. R. E. O.; ARAÚJO, J. V.; SAMPAIO, I. B. M.; RODRIGUES, M. L. A. Potencial dos fungos nematófagos Arthrobotrys sp. E Monacrosporium thaumanisium para o controle de larvas de ciatostomíneos de equinos (Nematoda: Cyathostominae). Revista Brasileira de Parasitologia Veterinária. v. 12, n. 2, p. 53-55, 2003.

GORDON, H. M.&WHITLOCK, H. V. A new technique for counting nematode eggs in sheep faeces. Journal Council Science Industry Research. v.12, p.50-52, 1939.

MATTHEWS, J. B. HODGKINSON, J. E.; DOWDALL, S. M. J.; PROUDMAN, C. J. Recent developments in research into the Cyathostominae and Anoplocephala perfoliata. Veterinary Research. v. 35, n. 4, p. 371-381, 2004.

ROBERTS, F. H. S. & O’ SULLIVAN, J. P. Methods of egg couts and laval cultures for strongyles infesting the gastrointestinal tract of cattle. Australian Agriculture Research. v. 1. p. 99-102, 1950.

Downloads

Publicado

2020-06-08